細胞診の検体処理Q&A——診断につながる標本作製のコツ、教えます #01
甲状腺穿刺吸引

甲状腺結節の穿刺吸引細胞診は、針生検と比べて侵襲性が低いうえに同等の診断精度を有する術前診断法です。そのため、基本的には生検を行わず、細胞診結果を参考にして治療方針が決定されます。採取量が不十分だったり、不適切な塗抹操作によって良悪性の判別が難しくなったりすると、再検査や不必要な手術につながる可能性があります。患者さんの負担を減らすために、少ない穿刺回数で質の高い標本を作製することが重要です。
Q1.十分な細胞量を採取するには?
A.超音波で結節内に針先が確実に入っていることが大前提です。そのうえで重要なのは、陰圧をほとんどかけず(目安は0.3mL以内)、短時間(3秒以内)で上下・回転操作を行い、組織を切り取るように採取することです。
甲状腺は血流の豊富な臓器であり、濾胞性腫瘍のように毛細血管に富んだ結節もあります。そのため、強い陰圧をかけたり長時間吸引したりすると、細胞よりも血液が多く採取されてしまいます。十分な細胞を得ようとして吸引を続けた結果、かえって血液ばかりの標本になってしまうことも少なくありません。
穿刺のコツは、「吸う」のではなく「切り取る」イメージをもつことです。採取量の目安は、検体が針基(ハブ)内に収まる程度です(動画1)。
Q2.適切な塗抹法とは?
A.穿刺吸引細胞診では、組織構築を保ちやすい「合わせ法」を推奨します。検体をスライドガラス上に吐出したら、もう1枚のスライドガラスを直交する向きで合わせます。検体が薄く広がったら、合わせたスライドガラスを横にすり合わせることなく、そのまま真上に引き離して塗抹します。横にすり合わせると細胞集塊が引き延ばされ、組織構築が損なわれてしまいます。
細胞量が多い場合や検体の粘稠度が高い場合は、1回目の塗抹面のすぐ横でもう一度合わせ法を行います。すると、1つ目の塗抹面では組織構築を、2つ目の塗抹面では個々の細胞所見を観察しやすい標本ができあがります。
一方で、検体量が非常に少ない場合は、合わせ法を行っている間に乾燥変性してしまうので、検体を吐出したら何もせず、ただちに固定しましょう。
Q3.血液混入時の対処法は?
A.どれだけ気をつけて穿刺していても、血液が混入してしまうことは少なくありません。血液が混入した検体をそのまま合わせ法で塗抹すると、細胞が血液成分に埋もれ、詳細な観察が難しくなってしまいます。
血液が混入した場合は、まずスライドガラスを垂直に立てて余分な血液を流し落とします。その後、垂直を保ったまま台にしっかり叩きつけ、血液をさらに流し落とします。この操作は思い切り行って構いません。血液をしっかり叩き落としても、細胞成分は検体を吐出した部分に残っています。続いて、検体の吐出部を避けながらティッシュペーパーで残った血液を拭き取り、合わせ法を行います。
適切に血液が除去されていると、2枚のスライドガラスを合わせた際に、検体がスライドガラスの端から端まで広がらず、きれいな円形に広がります。これが、血液除去が上手くいったサインです(動画2)。
また、溶血作用のあるLBC固定液で穿刺針内に残った検体を洗い出し、LBC標本を作製することも、血液混入への有効な対処法の一つです。
One Point Lecture「LBC導入のメリット」
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LBC導入のメリットとして、効率的な細胞回収と乾燥・挫滅変性の回避により、検体不適正率が低減することは、皆さんご存じかと思います。 甲状腺細胞診では、溶血作用や蛋白溶解作用を有するLBC固定液を使用することで、赤血球や液状コロイドが減少し、直接塗抹標本ではそれらに埋もれていた細胞を観察しやすくなるという利点があります。 また、甲状腺腫瘍にはユニークな免疫染色態度を示すものが少なくなく、免疫染色が鑑別に有用な場面があります。LBC標本は1検体から複数枚作製できるため、複数抗体を用いた免疫染色を比較的容易に行うことができます。 |
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